Объем ооцита определяется внутриклеточной осмотической регуляцией, основанной на оттоке и притоке органических осмолитов, таких как глицин и бетаин. Внутриклеточный осмотический баланс может быть изменен составом питательной среды и криоконсервацией, что приводит к изменению объема ооцита, увеличивая риск неудачного развития эмбриона.
Именно поэтому такие показатели размеров ооцита, как объем и площадь, были предложены в качестве прогностических морфологических маркеров раннего развития и качества эмбриона.
Цель исследования:
изучение взаимосвязи между площадью ооцита и частотой оплодотворения, преимплантационным развитием эмбриона и установление маркера для оптимального раннего развития эмбриона.
Методы:
С 2017 по 2020 гг. 378 пар с показаниями к ЭКО (n=124) или ИКСИ (n=254) были включены в Роттердамскую когорту исследования. Полученные ооциты (n=2810) были оплодотворены и были культивированы в инкубаторе замедленной покадровой съемки EmbryoScope. Площадь ооцитов измеряли в момент оплодотворения (t0), появления пронуклеусов (tPNa) и их исчезновения (tPNf). Частота оплодотворения, качество эмбрионов, а также морфокинетика эмбрионов от стадии 2 клеток до стадии бластоцисты (t2-tEB) использовались в качестве показателей для определения роли площади ооцита.
Ооциты называли «использованными», если они были оплодотворены, а эмбрион был перенесён или криоконсервирован.
Культивирование эмбрионов.
Ооциты культивировались в EmbryoScope с t0 (времени оплодотворения) после ИКСИ и от tPNf (времени исчезновения пронуклеусов) после ЭКО.
Ооциты, которые были в два раза больше нормального объема (2150 мкМ в диаметре) или «гигантские» ооциты не использовались для ИКСИ или после проверки оплодотворения в ЭКО из-за их тетраплоидного происхождения.
Использовались следующие питательные среды:
- SAGE 1-step (CooperSurgical);
- G-TL (Vitrolife).
Отбор эмбрионов для переноса проводили путем морфологической оценки на 3-й или 5-й дни.
Морфологию эмбрионов на 3-й день ранжировали по количеству бластомеров, фрагментации, равенству размеров бластомеров и контакту клеток.
Отбор эмбрионов для криоконсервации проводили на 4-й или 5-й дни, оценивая изображения на EmbryoScope.
Результаты.
- Площадь ооцита уменьшается от оплодотворения до исчезновения пронуклеусов, и чем больше площадь ооцита во время оплодотворения, тем выше скорость сокращения.
- Ооцит бóльшего размера во время оплодотворения имел более низкие шансы на оплодотворение, особенно если площадь ооцита находилась в самом верхнем дециле (11 500–14 000 мкм²).
- Бóльшая площадь ооцитов во время исчезновения пронуклеусов была связана с более быстрым развитием преимплантационного эмбриона и более высоким качеством внутренней клеточной массы (ВКМ) .
Ооциты, которые развились в бластоцисты:
ВКМ класса A - 10 008 мкм²+582;
ВКМ класса B - 9811 мкм²±538;
ВКМ класса C - 9721 мкм²+696.
- Для трофэктодермы площадь ооцитов существенно не различалась между классами A, B или C.
- Ооциты женщин с избыточной массой тела и ожирением были небольшими, а также реже достигали стадии бластоцисты (корреляция с накоплением материнских транскриптов и метаболической активностью, которые проявлялись именениями в потреблении глюкозы, аминокислотных профилей и уровней триглицеридов).
Заключение.
Площадь ооцита является информативным маркером преимплантационного развития эмбриона, поскольку бóльшая площадь ооцита связана с более высоким качеством, более быстрым развитием эмбрионов и более высокой вероятностью их использования.