Найти в Дзене
iVolga Press

ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ОЦЕНКА РЫБНЫХ ПРЕСЕРВОВ РАЗЛИЧНЫХ ТОРГОВЫХ МАРОК РЕАЛИЗУЕМЫХ В ТОРГОВЫХ ТОЧКАХ ГОРОДА МОСКВА

Биотика, 3(10), Июнь 2016 Зверьков Д.А., Научная компания «Агровет», Москва, Россия Рыба, обладая исключительно высокими пищевыми и вкусовыми качествами, занимает важное место в рационе человека. А также рыбные продукты широко используются в повседневном использовании для диетического и детского питания. Известно, что рыба богата минеральными веществами, витаминами и незаменимыми аминокислотами, в том числе лизином. Рыбий жир состоит преимущественно из ненасыщенных жирных кислот, которые легче усваиваются организмом человека. В соответствие с Концепцией государственной политики в области здорового питания населения России и Федеральным законом «О качестве и безопасности продуктов питания» обеспечение страны качественными рыбными продуктами разнообразного ассортимента является одной из актуальных задач рыб хозяйственного комплекса России. В сложившейся ситуации дефицита продовольствия огромная роль принадлежит морепродуктам, особенно для населения стран, традиционно употребляющих морепр

Биотика, 3(10), Июнь 2016

Зверьков Д.А., Научная компания «Агровет», Москва, Россия

Рыба, обладая исключительно высокими пищевыми и вкусовыми качествами, занимает важное место в рационе человека. А также рыбные продукты широко используются в повседневном использовании для диетического и детского питания. Известно, что рыба богата минеральными веществами, витаминами и незаменимыми аминокислотами, в том числе лизином. Рыбий жир состоит преимущественно из ненасыщенных жирных кислот, которые легче усваиваются организмом человека. В соответствие с Концепцией государственной политики в области здорового питания населения России и Федеральным законом «О качестве и безопасности продуктов питания» обеспечение страны качественными рыбными продуктами разнообразного ассортимента является одной из актуальных задач рыб хозяйственного комплекса России.

В сложившейся ситуации дефицита продовольствия огромная роль принадлежит морепродуктам, особенно для населения стран, традиционно употребляющих морепродукты в своем рационе (Япония, Бирма, Филиппины, Индонезия, Китай и др.), где население более 50% всех используемых животных белков получает за счет гидробионтов, или Индия и Пакистан (более 30%). Рыбная отрасль это реальные природные, ресурсные, рыночные, экономические и социальные предпосылки для возрождения и дальнейшего развития.

Для удовлетворения потребительского спроса на продукты, максимально готовые к употреблению, перспективным является производство малосоленых формованных пресервов из рыбы и гидробионтов.

Высокие пищевые и вкусовые достоинства рыбы и других гидробионтов определили их большое значение в питании человека.

Основной технологической операцией, формирующей основные показатели качества пресервов - вкус и аромат является созревание. Большой вклад в исследовании процесса созревания соленой рыбы внесли.

Одним из основных направлений государственной политики в области здорового питания является создание широкого ассортимента гастрономических привлекательных, сбалансированных по составу и безопасных пищевых продуктов, обогащенных жизненно важными компонентами.

Сказанное относится и к технологии производства рыбных пресервов и к их качеству та как благополучие потребителя у нас стоит на первом месте, вся продукция, которая идет реализацию торговых сетей, должна соответствовать нормативной документации Российской Федерации.

Типы микроорганизмов и их количество в рыбе зависят от состояния среды обитания, а также от санитарно-гигиенических условий ее лова, обработки, транспортировки и хранения.

В бактериальную флору свежей рыбы входят обычно одни и те же роды микробов, хотя соотношение различных видов между собой может варьировать в широких пределах. Это - грамотрицательные бактерии Pseudomonas, Moraxella, Acinetobacter, Vibrio Aeromonas, Flavobacterium и Cytophaga, а также грамположительные Micrococcus и группа палочковидных бактерий (Corynebacterium).

Большинство нежелательных органолептических изменений, происходящих с рыбой после вылова, является результатом размножении бактерий, вид микробов и показатель роста зависят главным образом от температуры ее хранения. Например, при температуре 6°С карп портится в 2,5 раза быстрее, чем при 0°С. Поэтому, чрезвычайно важно быстро охладить рыбу до температуры тающего льда.

Когда рыба хранится во льду и способствующую порче микрофлору составляют Pseudomonas, Moraxella, Acinetobacter, органолептические изменения наступают, главным образом, в результате деятельности микроорганизмов из рода Pseudomonas. При такой температуре грамположительные бактерии размножаются медленно.

Согласно литературным данным и нашим многолетним исследованиям, прудовая рыба, выловленная из водоемов, загрязненных сточными бытовыми и промышленными водами, органическими веществами, может быть обсеменена патогенной и условно-патогенной для человека и животных микрофлорой. Такая рыба не проявляет никаких признаков заболевания, а является только микробоносителем.

Известно, что рыба может быть носителем возбудителя азиатский холеры человека, чумы свиней, рожистой, туберкулезной и кишечной палочек, сальмонелл, лептоспир, CI, botulinum, CI, perfringens, различной кокковой микрофлоры и др.

При определенных условиях патогенные микробы, попадая из окружающей среды в кишечник рыбы, могут проникать еще при жизни ее в другие внутренние органы и мышцы. Это явление отмечается у недоброкачественной рыбы, а также у травмированной, больной, снулой, хранившейся при комнатной температуре свыше 6 часов.

Загрязнение продукта микрофлорой после тепловой обработки чаще всего связано с попаданием в него микроорганизмов из рук рабочих, производящих расфасовку и упаковку продукции в тару. Обычно таким путем в пищевые продукты попадает Staphylococcus aureus, а иногда также Salmonellae, Streptococcus, Shigella, Escherichia coli и др.

Патогенная микрофлора сырья может попадать в готовую продукцию в том случае, если сырье и готовая продукция проходят через руки одного и того же рабочего или через одно и то же оборудование. Источником загрязнения продукции патогенной микрофлорой на предприятии могут также служить воздушные фильтры, дренирующие устройства, плохо очищенное оборудование и др.

Высокое гигиеническое качество рыбной продукции возможно лишь при правильно налаженном контроле на предприятии. Необходимо постоянно контролировать качество поступающего сырья и вспомогательных материалов, осуществлять пооперационный контроль технологического процесса (особенно - термообработки), контролировать санитарное состояние.

Цель исследований - дать ветеринарно-санитарную оценку рыбных пресервов различных торговых марок реализуемых в торговых точках города Москва.

Материалы и методы. Исследованию подлежали следующие образцы:

  • Пресервы рыбные: «Филе-кусочки сельди в бело-винном соусе» - производитель ООО «СК Калининград», 236013, Россия, Калининградская обл., г. Калининград, пос. А. Космодемьянского.
  • Пресервы рыбные: «Филе-кусочки сельди в винном соусе» - производитель ООО «СК Калининград», 236013, Россия, Калининградская обл., г. Калининград, пос. А. Космодемьянского.
  • Пресервы рыбные: «Филе-кусочки сельди в пряно-масляной заливке» - производитель ООО «СК Калининград», 236013, Россия, Калининградская обл., г. Калининград, пос. А. Космодемьянского.
  • Пресервы рыбные: «Килька балтийская пряного посола» - производитель ОАО "Рыбообрабатывающий комбинат № 1", 198096, Россия, Санкт - Петербург, Угольная гавань, Элеваторная пл., 16/7
  • Пресервы рыбные: «Сельдь в масле филе кусочки» - производитель ООО «Океан Трейдинг компании - П», 196608, Россия, Санкт – Петербург.

Нами было поисследовано свыше 20 образцов рыбных пресервов по органолептическим, физико-химическим, микробиологическим и токсикологическим исследованиям.

Отбор проб для проведения исследований проводили согласно «ГОСТ 31339-2006. Рыба, нерыбные объекты и продукция из них. Правила приемки и методы отбора проб».

Микробиологическое исследование пресервов начинали с определения общего количества микробных клеток (КМАФАнМ):

Для этого в стерильную пробирку помещали 1 г. продукта, взятого из среднего образца, добавляли 9 мл физиологического раствора (разведение 1 : 10) и тщательно встряхивали. Из полученной взвеси готовили разведения (1:10; 1:100; 1:1000; 1:10000; 1:100000). После оседания взвешенных частиц из верхнего слоя жидкости делали посевы.

Для количественного учета микробного загрязнения в стерильные бактериологические чашки вносили по 1 мл каждого разведения и заливали 10-15 мл стерильного, расплавленного и охлажденного до температуры 44-45ºС мясопептонного агара. Осторожно покачивая чашки, засеянный материал равномерно распределяли в агаре. После застывания среды чашки помещали (вверх дном) в термостат при температуре 37º С.

После 24 - 48 - часового термостатирования проводили подсчет выросших колоний в чашках. Результаты, полученные при подсчете колоний, умножали на разведения, суммировали и определяли количество микробов в 1 г. продукта.

Пресервы рыбные были исследованы на наличие сальмонелл, БГКП, Staphylococcus aureus, сульфитредуцирующих клостридий, Listeria monocytogenes, плесень и дрожжи с использованием методов, принятых в практике микробиологических исследований, а именно:

Метод последовательного обогащения (для выделения сальмонелл): навеску исследуемого материала 25 г вносили в колбу, содержащую среду предварительного обогащения (пептонная вода) при соотношении материала и среды 1:5.

Содержимое колбы тщательно перемешивали и ставили в термостат при температуре 37ºС. Через 16-18 часов производили посевы на бактериологические чашки с твердыми дифференциально-диагностическими средами: висмут-сульфит агар, среда Эндо (по две чашки) на две основные среды обогащения (селенитовый бульон и Раппапорт) в соотношении 1:5.

Одновременно при проведении микробиологических исследований по обнаружению указанных групп микроорганизмов нами были использованы современные хромогенные питательные среды.

После 16-18 - часового выдерживания в термостате при 37ºС из обогатительных сред бактериологической петлей производили вторично посевы на чашки с твердыми дифференциально-диагностическими средами (дополнительно рассеивали на Rambach-arap и XLT4 - ксилозо-лизиновый агар с Тергитолом, которые помещали в термостат при 37ºС.

Чашки с посевами просматривали через 16, 24, 48 часов.

Исследования на энтеропатогенные типы кишечной палочки (БГКП):

По 1 г продукта вносили в пробирки со средой Кесслера. Посевы помещали в термостат при температуре 43ºС (рисунок 8).

Через 24 часа учитывали рост: на средах Кесслера - по изменению цвета.

Из навески продукта готовят исходное и ряд десятикратных разведений так, чтобы можно было определить в 1 г (см) предполагаемое количество сульфитредуцирующих клостридий или их количество. Посев разведения 1:10 производили в среду Китт-Тароцци, после чего пробирки с посевами термостатировали в термостате при анаэробных условиях при температуре 37°С в течение 24-48 часов.

После чего производили пересев материала с среды Китт-Тароцци на кровяной агар, чашки термостатировали в термостате в анаэробных условиях при температуре 37°С в течение 24 часов.

Посев материала на определение Listeria monocytogenes:

Навеску исследуемого материала 25 г вносили в пробирку, содержащую среду предварительного обогащения (Файзер-1) при соотношении материала и среды 1:5.

После чего пробирки с посевами термостатировали в термостате при температуре 37°С в течение 24 часа. Потом производили пересев материала с Файзера – 1 на Файзер – 2 и термостатировали в термостате при температуре 37°С в течение 24 часа. И окончательно пересевы делаем с Файзер – 2 на среду Палкан термостатировали в термостате при температуре 37°С в течение 24 часа.

Определение в материале Staphylococcus aureus:

Из навески продукта готовят исходное и ряд десятикратных разведений так, чтобы можно было определить в 1 г (см) Staphylococcus aureus. Посев разведения 1:10 производили на среду желточно-солевой агар (ЖСА), после чего чашки с посевами термостатировали в термостате при температуре 37°С в течение 24-48 часов.

Определение в рыбных пресервах Vibrio Parahaemolyticus:

Для определения присутствия (отсутствия) пара гемолитических вибрионов в исследуемой пробе всю гомогенизированную навеску в 25 г переносят в 125 мл жидкой среды обогащения - 1%-й пептонной воды с 3% натрия хлорида и ингибиторами роста сопутствующей микрофлоры или без них. Накопительные среды инкубируют при (37 +/- 0,5)°С в течение 18 - 20 ч, после чего делают высев петлей с поверхностного слоя обогатительной среды на 1 - 2 чашки элективной среды селективной средой для выделения патогенных вибрионов - TCBS для получения роста в виде изолированных колоний.

Определение дрожжей и плесени в исследуемых образцах:

Из подготовленного разведения делают посевы на чашки Петри по 1 мл из расчета 2 чашки с каждого разведения. Посев материала производили агаризированую среду Сабуро, после чего чашки донышком к верху ставили в термостат на 5 суток при t 28◦С. По истечению трех суток учитывали первый результат характерного роста плесени и дрожжей. Через 5 проводили окончательный учет результатов термостатирования посевов.

Колонии плесени и дрожжей разделяют визуально. Рост дрожжей на агаризованных средах характеризуется образованием крупных, выпуклых, блестящих серовато-белых колоний с гладкой поверхностью и ровными краями.

Развития плесневых грибов на питательных средах сопровождается появлением мицелия различной окраски.

Для количественного определения отбирают чашки, на которых выросло от 15 до 150 колоний дрожжей и от 5 до 50 колоний плесневых грибов.

Микробиологические исследования проводят с соблюдением требований санитарно-эпидемиологических правил СП 1.2.731-99 «Безопасность работы с микроорганизмами III - IV групп патогенности и гельминтами» в лабораториях, имеющих лицензии на работу с микроорганизмами III - IV групп патогенности.

Результаты и обсуждение собственных исследований. Слабосоленая рыбная продукция из мелкой рыбы (кильки, салаки, хамсы и др.), выпускаемая в герметично закрытой таре — пресервы — помимо небольшого количества соли содержит сахар и специи. Пресервы не подвергают тепловой обработке; для предохранения от порчи в них вводят антисептик — бензойнокислый натрий (0,1%). Хорошие результаты взамен него или в сочетании с ним дают сорбиновая кислота и антибиотик низин. Процесс просаливания и созревания ведут в течение 1,5—3 мес. при температуре от —5 до 2°С. Некоторый консервирующий эффект обеспечивает и поваренная соль.

Микрофлора пресервов в первые дни их изготовления разнообразна; в состав ее входят микроорганизмы рыбы, соли и специи. Последние нередко в значительной степени (104—106/г) обсеменены спорообразующими аэробными и анаэробными бактериями и микрококками, среди которых имеются солеустойчивые и холодоустойчивые гнилостные формы. В процессе созревания пресервов состав их микрофлоры меняется. Доминирующими представителями становятся солеустойчивые микрококки и молочнокислые бактерии.

Наличие кислот, соли и антисептика, а также низкая температура препятствуют развитию гнилостных споровых бактерий, находящихся в немалых количествах в пресервах. Однако некоторые из них, особенно при нарушении технологического режима изготовления и хранения пресервов, могут развиваться и обусловить порчу продукта. В пресервах нередко обнаруживается Clostridium perfringens — обитатель кишечника рыб, попадающий и со специями. Активное развитие этой бактерии может привести к бомбажу банки. Для повышения стойкости пресервов в хранении рекомендуется пользоваться стерильными специями. Для лучшего сохранения ароматических свойств специй целесообразна их холодная стерилизация (УФ-лучами, гамма-радиацией).

Нами были проведены микробиологическое исследование рыбных пресервов различных торговых морок реализуемых в торговых точках г. Москвы, результаты исследований представлены в таблице 3.

В результате проведенных исследований по микробиологическим исследования такие рыбные пресервы как «Килька балтийская пряного посола» - производитель ОАО "Рыбообрабатывающий комбинат № 1", 198096, Россия, Санкт - Петербург, Угольная гавань, Элеваторная пл., 16/7 и «Сельдь в масле филе кусочки» - производитель ООО «Океан Трейдинг компании - П» 196608, Россия, Санкт – Петербург, соответствовали по заявленным показателям СанПиН 2.3.2.1078-01. А пресервы рыбные: «Филе-кусочки сельди в бело-винном соусе»; «Филе-кусочки сельди в винном соусе» и «Филе-кусочки сельди в пряно-масляной заливке» - производитель ООО «СК Калининград», 236013, Россия, Калининградская обл., г. Калининград, пос. А. Космодемьянского не соответствовали СанПиН 2.3.2.1078-01, поскольку в них было обнаружена L. Monocytogenes.

Заключение. В настоящее время одним из приоритетных направлений рыбной отрасли остается создание технологий, которые бы обеспечивал наиболее полное использование всех ценных компонентов рыбы, нерыбных объектов и отходов от их разделки (молок, икры, печени, гонад, внутренностей и т.п.) на пищевые, лечебно-профилактические цели.

Уровень развития современной науки позволяет вместо традиционных технологий применять новые принципы глубокого фракционирования сырьевых ресурсов, получая при этом продукты принципиально нового качества и назначения.

Следует подчеркнуть, что качество и безопасность пищевой, в том числе и рыбной, продукции - понятия неотделимые друг от друга (Маслова Г.В., 2007). И он не всегда соответствуют друг другу.

По результатам исследований полученные микробиологические данные совпадают с органолептической оценкой готовой продукции: на 70-е сут, хранения в экспериментальном и контрольном образцах отмечаются наивысшие органолептические оценки (15 и 14,1 баллов соответственно), после чего происходит незначительное снижение этого показателя до 13,5 и 12,6 баллов.

По проведенным исследованиям органолептическая оценка основных показателей качества пресервов, реализуемых на рынке Калининградской области. Исследован показатель предельного напряжения сдвига исследуемых пресервов. Определены удовлетворительные, неудовлетворительные и наилучшие образцы по показателю консистенции.

Анализ микробиологического состояния исследуемых образцов предусматривал определение численности мезофильных аэробных факультативно-анаэробных бактерий (КМАФАнМ), условно-патогенной и патогенной микрофлоры (бактерии группы кишечной палочки, сульфитредуцирующие клостридии, Staphylococcus aureus, Salmonella, L. Monocytogenes), а также дрожжей и плесневых грибов, видового состава микрофлоры.

По проведенным исследованиям был получены следующее результаты микробиологической обсемененности сырья, служащего основой для приготовления пресервов в крем-соусе, показали, что уровень КМАФАнМ находится в пределах допустимых значений и составляет: для сельди балтийской охлажденной 8,8´103 КОЕ кл/г; просоленного ароматизированного полуфабриката - 2,1´102 КОЕ кл/г; крем-соуса - 2,9´103 КОЕ кл/г; майонеза - 9,0´103 КОЕ кл/г. Условно-патогенная и патогенная микрофлора в исследуемых образцах не выделена.

При изучении готовых пресервов в процессе хранения было установлено, что по истечении 90 сут. при отрицательной температуре значение КМАФАнМ в экспериментальных и контрольных образцах составило 8´102 и 8,5´102 КОЕ кл/г соответственно, что не превышало регламентированного уровня (2´105 КОЕ кл/г). Необходимо отметить, что в течение первых 70-ти сут. хранения наблюдалась тенденция к снижению общей бактериальной обсемененности: с 5´102 КОЕ кл/г до 3,4´102 КОЕ кл/г в экспериментальных и с 1,3´104 КОЕ кл/г до 5,5´102 КОЕ кл/г в контрольных образцах. Затем, после 160 сут. хранения, последовало ее незначительное повышение до 6´103 и 7´103 КОЕ кл/г, соответственно.

При проведении микробиологических исследований рыбных пресервов различных торговых марок нами не было обнаружено патогенной и условно патогенной микрофлоры в двух образцах, в одном из которых было КМАФАнМ 4,0×103 и дрожжи 8 КОЕ/г, что находится в пределах нормы. В пресервах, производитель которых ООО «СК Калининград» было обнаружено L. monocytogenes и дрожжи 130 КОЕ/г, что не соответствует «Гигиеническим требованиям безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов» (Санитарные нормы и правила СанПиН 2.3.2.1078-01).

Анализируя полученные результаты исследований рыбных пресервов по показателям безопасности они соответствовал действующим нормативным документам РФ, а именно СанПиН 2.3.2.1078-01.

Original paper, i.e. Figures, Tables, References, and Authors' Contacts available at http://journal-biotika.com/current-issues/2016-03/article_01.pdf