Найти тему
ALL-MS блог

Одновременный анализ 10 микотоксинов в неочищенных экстрактах зёрен методом ЖХ-МС/МС

Оглавление

Simultaneous Analysis of 10 Mycotoxins in Crude Extracts of Different Types of Grains by LC-MS/MS

Авторы оригинальной статьи: Дороте Эльберт и Кристин фон Чапевски (SCIEX, Дармштадт, Германия), Ингрид Буяра, Юрген Кунзе и Анджела Джиджер (SGS Germany GmbH, Гамбург, Германия)

Фото Raphael Rychetsky (https://unsplash.com/photos/li9JfUHQfOY)
Фото Raphael Rychetsky (https://unsplash.com/photos/li9JfUHQfOY)

Обзор

В данном материале продемонстрирован валидированный метод ЖХ-МС/МС по выявлению 9 токсинов, вырабатываемых грибами рода Fusarium (Фузариум), и охратоксина А в разбавленных неочищенных экстрактах зерна.

Пробоподготовка быстрая, простая, надежная и недорогая. Метод ЖХ-МС/МС в режиме Мониторинга Множественных Реакций (ММР - MRM) выявляет все вещества за один рабочий цикл, предел количественного определения: 0,3 мкг/кг – 10 мкг/кг.

Метод утвержден для анализа образцов пшеницы, ржи, ячменя и овса.

Введение

Микотоксины вредны для здоровья человека и животного. Они либо канцерогенные, либо цитотоксические и наносят вред иммунной системе.

Зерновые культуры часто загрязнены охратоксином А и токсинами Fusarium. Токсины, выделяемые грибами Fusarium, можно встретить во всех видах зерна: пшеница, рожь, кукуруза, ячмень (солод) и овес. Контаминация зависит от условий климата во время выращивания, процесса сбора урожая и его хранения. К примеру, из-за плохих погодных условий в 2007 году, в Германии был обнаружен высокий уровень загрязнения пшеницы дезоксиниваленолом (DON), а пшеницы и овса – Т2 и НТ-2.

Ввиду этого различные государства установили нормы в отношении содержания микотоксинов. Пределы содержания микотоксинов для Европейского Союза согласованы в постановлении о нежелательных примесях в продуктах питания (ЕС 1881/2006 от 19 декабря 2006 года) с последующими поправками (ЕС 1126/2007 от 28 сентября 2007 года). Законодательство и Европейская программа мониторинга фокусируется на таких токсинах Fusarium как дезоксиниваленол, зеараленон, НТ-2 и Т-2, ввиду их частого и возрастающего применения. Для последних двух Европейская комиссия 1 июля 2008 года установила максимально допустимые уровни их содержания. Предел для обоих токсинов Fusarium Т-2 и НТ-2: не более 50 мкг/кг. [1-3]

Очевидна необходимость надежного, чувствительного, эффективного и быстрого метода анализа большого количества микотоксинов в зерне. Существующие методы не показывали необходимой производительности. А для очистка с использованием иммуноаффинных колонок необходимо много временных и финансовых затрат.

Поэтому был разработан метод выявления 9 токсинов, вырабатываемых грибами Fusarium: DON, зеараленон (ZON), 3-ацетил-дезоксиниваленол (3-AcDON), 15-ацетил-дезоксиниваленол (15-AcDON), НТ-2, Т-2, фузаренон-Х (FUS X), ниваленол (NIV), диацетоксисцирпенол (DAS) и охратоксин А (ОТА) [рисунок 1].

Рисунок 1. Приоритетные микотоксины, прошедшие анализ ЖХ-МС/МС.
Рисунок 1. Приоритетные микотоксины, прошедшие анализ ЖХ-МС/МС.
  • Разбавленные неочищенные экстракты прошли анализ при использовании жидкостной хроматографии и тандемной масс-спектрометрии (ЖХ-МС/МС) за один рабочий цикл с помощью системы ЖХ-МС/МС API 4000 ™.
  • Для проведения анализа не требуется много времени и затрат на подготовку пробы.
  • Метод был утвержден для пшеницы, ржи, ячменя и овса.
  • В рамках данного метода было проанализировано около 220 проб зерна.
  • Предел количественного определения варьируется между
    0,3 мкг/кг и 10 мкг/кг в зависимости от вещества.

Условия эксперимента

Подготовка пробы

  1. Измельчить и гомогенизировать 10 г зерна.
  2. Добавить 40 мл ацетонитрила / воды (84/16).
  3. Для экстракции смешивать в течение 90 минут (220 оборотов в минуту).
  4. Отфильтровать с помощью Whatman S&S 1573 1⁄2.
  5. Разбавить фильтрат 1:10 с водой + 5 ммоль ацетата аммония.
  6. Ввести 100 μл в систему ЖХ-МС/МС.

Условия ВЭЖХ

  • Использовалась система ЖХ Shimadzu Prominence, состоящая из контроллера системы, двух насосов, дегазатора, автосамплера и термостата колонок.
  • Разделение проходило на колонке Agilent ZORBAX Eclipse XDB C18, 100×4,6 мм (1,8 μм).
  • Установленная температура термостата колонки: 40 °C.
  • Градиент: элюент А = вода + 5 ммоль ацетата аммония,
    элюент В = метанол + 5 ммоль ацетата аммония.
  • Cкорость потока 500 μл/мин.
  • Сведения о градиенте приведены в таблице 1.
  • Объем инъекции 100 μл.
Таблица 1. ЖХ градиент для разделения микотоксинов
Таблица 1. ЖХ градиент для разделения микотоксинов

Условия МС/МС

Использовалась система ЖХ-МС/МС АPI 4000™, оснащенная источником Turbo V™ и зондом для электрораспылительной ионизации.

Метод состоит из трех периодов с изменением полярностей (0,0 - 7,6 мин отрицательная; 7,6 - 9,2 мин положительная; 9,2 - 16,0 мин отрицательная).

Использовались следующие параметры ионного источника:

  • Температура 600 °C
  • Газовая завеса: 25 psi, Газ 1: 50 psi, Газ 2: 70 psi, Газ CAD: 6 (положительная) или 10 (отрицательная), напряжение IS: +5000 В или -4000 V, соответственно.
  • Все микотоксины были обнаружены при использовании двух MRM-переходов в следующем порядке:
    - первый период NIV, DON, FUS X, AcDON;
    - второй период DAS, OTA, HT-2, T-2;
    - третий период ZON.
  • Так как 3-AcDON и 15-AcDON не разделились во время проведения хроматографии, для определения использовались специальные переходы соединений. Использованные MRM-переходы приведены в [таблице 2], спектры дочерних ионов 3-AcDON и 15-AcDON показаны на [рисунке 2].
Таблица 2. MRM-переходы для определения микотоксинов
Таблица 2. MRM-переходы для определения микотоксинов

Рисунок 2. Спектры дочерних ионов 3-AcDON и 15-AcDON (отмечены дочерние ионы, выявленные при MRM)
Рисунок 2. Спектры дочерних ионов 3-AcDON и 15-AcDON (отмечены дочерние ионы, выявленные при MRM)

Результаты и обсуждение

На [рисунке 3] приведена стандартная хроматограмма 9 токсинов Fusarium при 50 мкг/кг и охратоксина А при 10 мкг/кг. Во время оценки было установлено, что чувствительность MRM-переходов зависит от качества используемых растворителей, также от анализируемых матриц.

AcDON, DON, FUS X и NIV обычно показывают хорошую чувствительность для [M+CH3COO]- и [M-H]-. Тем не менее, для лучшего отношения «сигнал-шум», воспроизводимости и извлечения были использованы MRM-переходы, перечисленные в [таблице 2] выше.

Рисунок 3. Стандарт микотоксинов, анализируемый с помощью ЖХ-МС/МС в MRM-режиме
Рисунок 3. Стандарт микотоксинов, анализируемый с помощью ЖХ-МС/МС в MRM-режиме

Специальная характеристика ионизации была обнаружена для НТ-2. Чувствительность MRM [M+NH4]+ или [M+Na]+ отличается в зависимости от анализируемой матрицы [рисунок 4].

Рисунок 4. Сравнение MRM интенсивностей НТ-2 в различных матрицах ([M+Na]+: 447/345 синий, 447/285 красный, [M+NH4]+: 442/263 зеленый, 442/105 серый)
Рисунок 4. Сравнение MRM интенсивностей НТ-2 в различных матрицах ([M+Na]+: 447/345 синий, 447/285 красный, [M+NH4]+: 442/263 зеленый, 442/105 серый)

Предел количественного определения был установлен для ОТА: 0,3 мкг/кг, для НТ-2, Т-2 и ZON: 5 мкг/кг, для AcDON, DON, FUS X, DAS и NIV: 10 мкг/кг.

Особые исходные хроматографические условия для NIV послужили поводом для исследовательских поисков. При объеме инжекции 100 μл с десятикратным разведением пробы были установлены намного лучшие показатели пределов количественного определения, чем при объеме прямой инъекции 25 μл или 50 μл с 1/5 разведением пробы. Ацетонитрил в пробе в конце процедуры экстракции вызвал расширение пика для NIV. Такой эффект может быть устранен путем 10-кратного разбавления пробы в 100% воде + 5 ммоль ацетата аммония.

Таблица 3. Пределы количественного определения и линейный динамический диапазон выявленных микотоксинов

Примечания к таблице 3: # Постановление ЕС 1881/2006 с внесенными поправками 1126/2007:
* Необработанная твердая пшеница и овес
** Необработанные злаки, кроме твердой пшеницы и овса
*** Необработанные злаки

(1) Из-за смежности и предполагаемого «низкого» уровня максимально допустимый уровень не рассчитывался
(2) Целесообразность установления максимального уровня устанавливается в соответствии с постановлением от 1 июля 2008 года
Таблица 3. Пределы количественного определения и линейный динамический диапазон выявленных микотоксинов Примечания к таблице 3: # Постановление ЕС 1881/2006 с внесенными поправками 1126/2007: * Необработанная твердая пшеница и овес ** Необработанные злаки, кроме твердой пшеницы и овса *** Необработанные злаки (1) Из-за смежности и предполагаемого «низкого» уровня максимально допустимый уровень не рассчитывался (2) Целесообразность установления максимального уровня устанавливается в соответствии с постановлением от 1 июля 2008 года

Заметки

  • Калибровочные кривые всех веществ значительно отличаются. Предел количественного определения и верхние границы линейного динамического диапазона всех выявленных микотоксинов представлены в [таблице 3].
  • Показатели извлечения были определены для каждого микотоксина в каждой матрице в сравнении с калибровочными кривыми без матрицы [таблицы 4-6].
  • Было установлено, что растворы экстрагированных зерен остаются стабильными в течение 36 часов в условиях холода (4 °C).
  • Наблюдался большой перенос ОТА из предыдущей пробы при вводе высоких концентраций стандарта, ввиду этого были введены холостые пробы растворителя после инъекций стандартов.
  • С июля 2007 года около 220 проб зерна было проанализировано при использовании представленного здесь валидированного метода.
  • Представленные данные основаны на данных Европейской программы мониторинга зерна, выбранные данные представлены в [таблицах 4 и 6].
Таблица 4. Результаты для пшеницы / твердой пшеницы
Таблица 4. Результаты для пшеницы / твердой пшеницы

Таблица 5. Результаты для ячменя
Таблица 5. Результаты для ячменя

Таблица 6. Результаты для ржи
Таблица 6. Результаты для ржи

Заключение

Разработанный метод подходит для анализа 9 токсинов Fusarium (Фузариум) и ОТА за один рабочий цикл ЖХ-МС/МС без необходимости проведения времязатратной подготовки пробы / обогащения.

Предел количественного определения был установлен
для
ОТА: 0,3 мкг/кг,
для
НТ-2, Т-2 и ZON: 5 мкг/кг,
для
AcDON, DON, FUS X, DAS и NIV: 10 мкг/кг.

Данные показатели соответствуют требованиям национальных и европейских постановлений, принятых в отношении пределов определения.Процентные показатели извлечения были определены в диапазоне: 21 – 100 %.

Источники

Данные из материала можно использовать только для использования в научно-технических целях. Не для использования при проведении диагностических процедур! Для диагностики in vitro.

Упомянутые в настоящем документе товарные знаки и/или зарегистрированные товарные знаки являются собственностью SCIEX Pte. Ltd. или соответствующих владельцев на территории Соединенных Штатов Америки и/или в иных странах. AB SCIEX™ используется в соответствии с лицензией. Авторское право 2010 DH Tech. Dev. Pte. Ltd.

Номер оригиальной публикации: 1121410-01