В процессе отбора донорской крови у кошек используются открытые или полузакрытые системы. Последние представляют собой шприцы или два мешка, связанных между собой полимерными трубками, снабженными трехходовым краном и шприцом большого объема. Для более оптимального сбора и хранения крови и её компонентов рекомендуется предпочитать полузакрытые системы. В некоторых случаях допускается использование шприцов, но только с последующим переливанием крови в пакеты, что требует соблюдения максимальной асептики, так как это повышает риск контаминации.
Следует избегать отбора и хранения крови и её компонентов в шприцах, в основном из-за краткого времени хранения - не более 24 часов при температуре +4∘C (для эритроцитарной массы и цельной крови) или -20∘C (для плазмы). Это связано с рисками контаминации и тем, что эритроциты, хранящиеся в пластиковых шприцах, не могут "дышать", что делает их более хрупкими и менее жизнеспособными.
В Российской Федерации, к сожалению, закрытые системы типа TEC 724 не доступны, поэтому они не рассматриваются в данном случае.
Для стабилизации крови используются антикоагулянты, которые берутся из контейнеров закрытого типа. Пропорции объёма отбираемой крови к объёму антикоагулянта и чаще всего составляет 1:4. Важно выбирать подходящие контейнеры для этой цели, такие как:
- Контейнер "Гемасин" 250/200 для крови и её компонентов с раствором "Глюгицир" или "Фаглюцид", с устройством для подключения вакуумной пробирки (адаптером) и протектором для защиты иглы, а также с емкостью для анализов.
- Контейнер "Гемасин" 375/
- 300 для крови и её компонентов с раствором "Глюгицир" или "Фаглюцид" или "ЦФГ", с устройством для подключения вакуумной пробирки (адаптером) и протектором для защиты иглы, а также с емкостью для анализов.
- Контейнер "Гемасин" 500/400 для крови и её компонентов с раствором "Глюгицир" или "Фаглюцид" или "ЦФГ", с устройством для подключения вакуумной пробирки (адаптером) и протектором для защиты иглы, а также с емкостью для анализов.
При взятии антикоагулянта не рекомендуется вскрывать контейнеры с SAGM и лейкоцитарным фильтром, так как они обладают более высокой стоимостью, а их состав не отличается от контейнеров, упомянутых выше. Вместо этого предпочтительнее использовать антикоагулянт "фаглюцид", который обеспечивает более продолжительное хранение крови и компонентов.
Перед забором донорской крови необходимо подготовить все необходимые материалы и оборудование:
- Контейнер "Гемасин" нужного объема и конфигурации для забора антикоагулянта;
- Двухкамерный мешок с трехходовым краном и шприцом, содержащим антикоагулянт;
- Габапентин (в дозе 30-50 мг/кг, если донор неспокоен и не может полежать на спине/боку во время донации);
- Игла-бабочка с предпочтительным размером 21G для избежания повреждения клеток крови и гемолиза;
- Шприцы разного объема;
- Периферический венозный катетер для сбора крови на исследования и восполнения объема циркулирующей крови после донации;
- Растворы кристаллоидов на выбор (Хартман, Стерофундин, Рингер);
- Машинка для бритья, ватные диски, антисептик для обработки кожи пациента;
- Нестерильные перчатки на усмотрение сотрудников;
- Выжиматель трубок и запаиватель полимерных контейнеров;
- Внимание и забота к донору!
Для кошек рекомендуется выделять отдельное, спокойное помещение с распылением феромонов, которые успокаивают животных. Владельцев можно попросить принести одеяльце или покрывало с запахом дома, чтобы создать более комфортную обстановку. Важно убрать все отвлекающие факторы из поля зрения кошки. Желательно расположить помещение неподалеку от операционной или анестезиологов, чтобы в случае негативных реакций быстро обеспечить стабилизацию состояния животного. Перед началом забора крови также рекомендуется контролировать артериальное давление. Обратите внимание, что у кошек с большим весом риск побочных реакций от донаций снижается. При выборе объема крови для забора следует ориентироваться на вес животного в нормальной кондиции, а не в упитанной (если, например, кот весит около 7 кг в упитанном состоянии, но его нормальный вес составляет около 5 кг, следует брать объем крови, рассчитанный на 5 кг).
Для забора крови у кошек оптимальным допустимым интервалом является 10-12 мл/кг, но предпочтительно не превышать 10 мл/кг.
Перед процедурой забора крови рекомендуется подготовить все необходимые материалы. Идеальным вариантом является забрать кота в отдельное помещение, особенно если животное проявляет признаки стресса. Иногда кошкам требуется дополнительное медикаментозное "сдерживание", и для этого можно использовать габапентин в высоких дозировках, как указано выше. Чтобы повысить интерес к таблетке, ее можно спрятать в кусочке паштета или пасты для кошек.
Позиционирование донора напрямую зависит от предпочтения флеботомиста и настроения кошки. Это может быть положение "на боку" или сидячее/стернальное положение, где голова кошки поднята обеими руками, а пальцы находятся под подбородком, а большие пальцы - над глазами. Это позволяет фиксирующему человеку нежно массировать голову кошки над глазами большими пальцами, что может способствовать тому, чтобы котик закрыл глаза. Во время сбора крови можно ориентироваться по шкале оценки стресса у кошек, чтобы обеспечить безопасность для донора.
Места установки периферического венозного катетера и пункции яремных вен необходимо подготовить с соблюдением асептики, удалив шерсть, которая может стать потенциальным источником контаминации. Важно аккуратно удалять шерсть, чтобы избежать раздражения кожи и пиодермии, что может привести к ухудшению состояния донора и создать негативное впечатление у владельца о процедуре донации. После установки внутривенного катетера его можно использовать для сбора анализов для предварительного скрининга донора, а также для введения кристаллоидов после окончания процедуры донации.
Кожа в области пункции яремной вены обрабатывается антисептиком и вытирается насухо. Ассистент применяет давление на место входа яремной вены в грудную полость для ее лучшего наполнения и визуализации, после чего в вену вводится игла-бабочка. Флеботомист старается держать иглу-бабочку неподвижно во время всего процесса забора, чтобы минимизировать дискомфорт у донора и избежать "трепетания" иглы в вене, что может вызвать пугливую реакцию и повредить эритроциты.
Обратите внимание, что первая порция крови считается нестерильной, поэтому ее следует утилизировать для снижения риска контаминации хранящейся крови и ее продуктов.
При наборе крови в шприц необходимо его перемешивать, чтобы избежать образования сгустков. Такая кровь не пригодна для переливания и должна быть утилизирована. Если в ходе набора крови в несколько шприцев обнаружен сгусток только в одном из них, допустимо утилизировать только этот шприц. Если ток крови снижается, рекомендуется на короткое время произвести окклюзию обеих яремных вен, что может ускорить процесс забора крови.
Антикоагулянт на основе цитрата допускает недобор или перебор крови до 10% от общего рассчитанного объема. В случае недобора рекомендуется разделить полученную кровь на компоненты для снижения риска цитратной токсичности. Если недобор является значимым по объему, то полученную плазму лучше утилизировать.
После забора крови следует наложить зажим на иглу-бабочку и аккуратно извлечь ее из вены, предотвращая попадание воздуха в систему. Затем необходимо наложить давящую повязку на место венепункции для предотвращения кровотечения.
Для переноса крови из шприца в пакет, трехходовой кран переводят в соответствующее положение. При этом важно проверить, закрыт ли переход к второму пакету, чтобы избежать перелива крови в добавочный мешок под давлением. Трубка ниже трехходового крана должна быть стерильно запаяна. Кровь, оставшаяся в этой трубке, должна быть отведена в пакет с цитратом. Для этого на трубке фиксируется выжиматель, а затем, в закрытом состоянии, его опускают вниз, что позволяет плавно передавать кровь в первичный мешок. После этого пакет с кровью переворачивают несколько раз, не разжимая выжиматель, чтобы обеспечить равномерное перемешивание крови и антикоагулянта. Эту манипуляцию следует повторить 2-3 раза. Затем трубку стерильно запаивают, оставляя небольшой "хвостик", который разделяют с помощью запаивателя на аликвоты с антикоагулированной кровью. Эти аликвоты можно использовать для перекрестной пробы перед переливанием.
После этого пакет с кровью маркируется, аликвоты связываются и фиксируются, а полученный продукт направляется на дальнейшую обработку.
В памятке необходимо указать дату следующей донации, рекомендуемый интервал между сдачей крови составляет 8-12 недель, так как эта схема донаций наиболее безопасна для постоянных доноров и не требует контроля уровня железа с последующей коррекцией.
В заключении для внутренней работы следует указать вену, использованное количество крови, примененный антикоагулянт, а также отметить осложнения, которые могли возникнуть в процессе сбора донорской крови. Также следует включить любую другую информацию, которая может быть полезна сотрудникам банка крови для дальнейшей работы с донором.
Кошки более чувствительны к потере крови, поэтому после процедуры донации крайне важно восполнить взятый объем растворами кристаллоидов, введя их подкожно или внутривенно в соотношении 1:1 (например, если было взято около 50 мл крови без учета антикоагулянта, то необходимо ввести кошке 50 мл раствора). Если возможно, весь объем можно ввести за 30-40 минут, особенно при использовании периферического венозного катетера для инфузии растворов.
После процедуры донации важно предложить кошке еду, воду и доступ к туалету. Также необходимо контролировать её давление, чтобы убедиться в отсутствии негативных реакций.
Если не наблюдается никаких негативных последствий, и состояние кошки стабильно, после окончания всех манипуляций её можно отпустить домой. Важно обеспечить комфортное окружение и спокойствие для кошки после донации.